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详细内容

大腸桿菌測試條使用方法

操作方法

樣品處理:取樣品25mL(g)放入含有225mL滅菌磷酸緩沖液稀釋液(或生理鹽水)的取樣罐或均質杯內,制成1:10的樣品勻液,必要時用1mol/LNaOH或1mol/L HCl溶液調節樣品勻液pH至6.6~7.2。用1mL滅菌吸管吸取1:10樣品勻液1mL,注入含有9mL稀釋液的試管內,振搖后成為1:100的樣品勻液,以此類推,做出1:1000等稀釋度的樣品勻液,每次換一支吸管。

接種:一般食品選2~3個稀釋度進行檢測,含菌量少的液體樣品(如飲用純水和礦泉水等)可直接吸取原液進行檢測。將菌落總數測試片(BB202)置于平坦實驗臺面,揭開上層膜,用無菌吸管吸取1mL樣品勻液慢慢均勻地滴加到紙片上,然后再將上層膜緩慢蓋下,靜置10s左右使培養基凝固,每個稀釋度接種兩片。同時做一片空白陰性對照。

培養:將測試片疊在一起放回原自封袋中并封口,透明面朝上水平置于恒溫培養箱內,堆疊片數不超過12片。一般食品培養溫度為36℃±1℃,培養15~24h;水產品培養溫度為30℃±1℃,培養48h。


結果判讀

*在測試片上生長后會顯示紅色斑點,選擇菌落數適中(30~300個)的測試片進行計數,乘以稀釋倍數后即為每毫升(或每克)樣品中所含的*菌落總數。

計數原則及報告方式

若只有一個稀釋度紙片上的菌落數在適宜計數范圍內,計算兩個紙片菌落數的平均值,再將平均值乘以相應稀釋倍數,作為每毫升(或克)樣品中菌落總數結果。

若有兩個連續稀釋度的紙片菌落數在適宜計數范圍內時,按式(1)計算:

N——樣品中菌落數;

∑C——測試片上(含適宜范圍菌落數的測試片)菌落數之和;

n1——*個適宜稀釋度測試片數;

n2——第二個適宜稀釋度測試片數;

d——稀釋因子(*稀釋度)。

若所有的稀釋度菌落總數均大于300CFU,則對稀釋度zui高的測試片進行計數,其他測試片可記錄為多不可計,結果按平均菌落數乘以zui高稀釋倍數計算。

若所有的稀釋度菌落總數均小于30CFU,則應按稀釋度zui低的平均菌落數乘以稀釋倍數計算。

若所有的稀釋度(包括液體樣品原液)均無菌落生長,則以小于1乘以zui低稀釋倍數計算。

若所有稀釋度的平均菌落數均不在30CFU~300CFU之間,其中一部分小于30CFU或大于300CFU,則以zui接近30CFU或300CFU的平均菌落數乘以稀釋倍數計算。

菌落總數的報告

菌落總數在100CFU以內時,按“四舍五入”原則修約,采用兩位有效數字報告。

大于或等于100CFU時,第三位數字采用“四舍五入”原則修約后,取前兩位數字,后面的0代替位數,也可用10的指數形式來表示,按“四舍五入”原則修約后,采用兩位有效數字。

若測試片上一片紅色無法計數時,則報告多不可計。

若空白對照上有菌落生長,則此次檢測結果無效。

稱重取樣以CFU/g為單位報告,體積取樣以CFU/mL為單位報告。

表面取樣方法

加1mL滅菌磷酸緩沖液(或生理鹽水)在測試片上,至少靜置10S,使培養基凝固;提起上層膜,使*濾紙部分貼到待測物表面,用手在外側輕壓;然后將上蓋膜合上,置培養箱內培養。

附加說明

菌落總數測試片檢測結果與傳統平板計數瓊脂平板法符合率可達80%以上,山東省疾病預防控制中心進行的驗證試驗表明,24h計數測試片上菌落數為平板菌落數的87%。

磷酸緩沖液稀釋液的配制與滅菌:貯存液:稱取34.0g的磷酸二氫鉀溶于500mL蒸餾水中,用大約175mL的1mol/L氫氧化鈉溶液調節pH至7.2,用蒸餾水稀釋至1000mL后貯存于冰箱。稀釋液:取貯存液1.25mL,用蒸餾水稀釋至1000mL,分裝于適宜容器中,121℃高壓滅菌15分鐘,或者放入消毒碗柜中消毒。

生理鹽水的配制與滅菌:取8.5g分析純氯化鈉(NaCl)溶解到1000mL蒸餾水或純凈水中,先煮開后進行分裝,取9mL加入到10mL潔凈試管中,蓋上硅橡膠塞或棉紗塞,放入紅外線消毒柜中消毒。

保存條件

本產品需存放在4℃~10℃冰箱中,保質期為一年,鋁箔袋打開后,未用完的紙片要放回鋁箔袋中封好,放到冰箱中,一個月內用完。在高濕度的環境中可能出現冷凝水,在拆封前將整包回溫至室溫


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